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如何用二氧化碳培養箱進行細胞復蘇、傳代及凍存實驗

更新時間:2018-03-07  |  點擊率:4764

一  復蘇 傳代

(1) 準備

   無菌超凈臺,酒精燈,75%酒精噴壺,二氧化碳培養箱,37℃水浴鍋,離心機;培養瓶,含10%胎牛血清的*培養基和基礎培養基以及PBS磷酸緩沖液(提前放置超凈臺使平衡到室溫),無菌工作服(白大褂),口罩,手套,記號筆

(2) 步驟

   1.穿好無菌工作服,帶上口罩和手套,快速從液氮里取出凍存管,快速放進37℃水浴鍋緩慢搖晃使細胞解凍,注意凍存管的封口膜不要破裂,防止污染。

   2.解凍后用紙擦干凍存管表面的水滴,酒精噴壺噴灑適量75%酒精消毒凍存管封口處。

   3.開超凈臺,點燃酒精燈燃燒片刻后(可提前準備),凍存管放超凈臺,換新手套,小心打開凍存管,避免污染,無菌吸管將1ml細胞全部吸出至5ml無菌EP管,補加9ml基礎培養基稀釋,1000rpm,離心5min使細胞沉淀,棄上清。

   4.加入新鮮配制的含10%血清的培養基4ml,輕輕混勻,用吸管將細胞移至25T培養瓶。

   5.平躺放置培養瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養箱培養。

   6.培養24小時后,顯微鏡觀察細胞(貼壁細胞)貼壁后,小心更換培養基,根據不同細胞的生長狀態進行傳代培養,培養瓶上標記:操作者,時間,細胞類型。

   7.有的實驗員的培養基會加入抗生素防止細胞污染,但是這對于掌握細胞培養是非常不利的,不加抗生素培養細胞更能提醒實驗者無菌操作的意識。一旦細胞出現污染,易于發現,一旦發現污染的細胞應立刻煮沸丟棄,以免污染同實驗室其他細胞。

   8.細胞長滿90%-100%即可傳代,小心打開培養瓶,瓶口過酒精燈消毒,棄培養基。

   9.加入1mlPBS,潤洗細胞,重復3次,棄PBS。

   10.加入4ml*培養基,用無菌吸管小心吹打貼壁細胞或者用胰蛋白酶消化細胞使細胞脫落。

   11.轉移1/2脫落的細胞至新的培養瓶,各瓶補加*培養基至4ml。

   12.小心封口,平躺放置培養瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養箱培養。

   13.待長滿后,按同樣的方法傳代培養。

二  凍存

當不需要使用細胞或者細胞量足夠時,可以將細胞凍存起來,供以后實驗用

(1) 準備

    細胞凍存液(20%血清、10%DMSO、70%基礎培養液),梯度降溫盒

(2) 步驟

        1.選取活力好,密度約70%細胞用于凍存,此時細胞處于對數生長期,用于凍存。

        2 .細胞吹打或者胰酶消化后,轉移至無菌EP管,1000rpm里面5min。

        3.棄上清,加入新鮮配制的細胞凍存液,25T細胞可以加入2ml細胞凍存液,分裝2個凍存管,細胞*密度為5*106-1*107個每ml。

        4.做好標記,放入梯度降溫盒(提前平衡至室溫)。

        5.將梯度降溫盒放入-80℃冰箱過夜,第二天取出凍存管,快速放入液氮保存。

 

遵循“快速復蘇,緩慢凍存”的原則。

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